journal.isu.ru

Начальная страница

Конечная страница

УДК

Раздел
     

Файл
Скачать Изменить файл

Название RU

Авторы RU

Аннотация RU
<p>Изучена возможность активации программируемой клеточной гибели (ПКГ) в суспензионной культуре клеток озимой пшеницы низкими положительными (4 и 8 ºС) и отрицательной (-8 ºС) температурами. Показано, что обработка температурой 8 °С способствует формированию механизмов низкотемпературной адаптации, в то время как температура 4 ºС вызывает гибель клеток в культуре, которая усиливается после воздействия отрицательной температурой. Установлено, что процесс клеточной гибели сопровождается характерными признаками ПКГ, такими как конденсация протопласта и фрагментация ДНК.</p>

Ключевые слова RU

Литература RU
1. Белки низкотемпературного стресса растений / В. К. Войников [и др.]. – Иркутск : Изд-во Ин-та географии СО РАН, 2004. – 129 с. 2. Ванюшин Б. Ф. Апоптоз у растений / Б. Ф. Ванюшин // Успехи биол. химии. – 2001. – Т. 41. – С. 3–38. 3. Лакин Г. Ф. Биометрия : учеб. пособие для биол. спец. вузов. / Г. Ф. Лакин. – М. : Высш. шк., 1990. – 352 с. 4. Программируемая клеточная смерть у растений: действие ингибиторов синтеза белка и структурные изменения в устьичных клетках гороха / Е. В. Дзюбинская [и др.] // Биохимия. – 2006. – Т. 71. – С. 493–504. 5. Сердюк И. Методы в молекулярной биофизике : структура, функция, динамика : учеб. пособие : в 2 т. / И. Сердюк, Н. Заккаи, Дж. Заккаи. – М. : КДУ, 2009. – Т. 1 – 568 с. 6. Трунова Т. И. Растение и низкотемпературный стресс / Т. И. Трунова. – М. : Наука, 2007. – 54 с. 7. Финкельштейн А. И. Физика белка / А. И. Финкельштейн, О. Б. Птицын. – М. : КДУ, 2005. – 456 с. 8. Baker C. J. An improved method for monitoring cell death in cell suspension and leaf disk assay using evans blue / C. J. Baker, N. M. Mock // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. – 1994. – Vol. 39. – P. 7–12. 9. Chromatin fragmentation associated with apoptotic changes in tobacco cells exposed to cold stress / B. Koukalová [et al.] // FEBS Lett. – 1997. – Vol. 414. – P. 289–292. 10. Early stages of the apoptotic pathway in plant cells are reversible / I. E. W. O’Brien [et al.] // Plant J. – 1998. – Vol. 13. – P. 803–814. 11. Ferri K. F. Mitochondria – the suicide organelles / K. F. Ferri, G. Kroemer // BioEssays. – 2001. – Vol. 23. – P. 111–115. 12. From plants to animals; the role of plant cell death in ruminant herbivores / A. H. Kingston-Smith [et al.] // J. Exp. Bot. – 2008. – Vol. 59. – P. 521–532. 13. Heath M. C. Apoptosis, programmed cell death and the hypersensitive response / M. C. Heath // European J. Plant Pathology. – 1998. – Vol. 104. – P. 117–124. 14. Jones A. M. Programmed cell death in development and defense / A. M. Jones // Plant Physiol. – 2001. – Vol. 125. – P. 94–97. 15. Kerr J. F. R. A basic biological phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics / J. F. R. Kerr, A. H Wyllie., A. R. Currie // Br. J. Cancer. – 1972. – Vol. 26. – P. 239–257. 16. Laemmli U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of head bacteriophage T4 / U. K. Laemmli // Nature. – 1970. – Vol. 227. – P. 680–685. 17. Lin J. Salt stress-induced programmed cell death via Ca2+-mediated mitochondrial permeability transition in tobacco protoplasts / J. Lin, Y. Wang, G. Wang // Plant Growth Regulation. – 2005. – Vol. 45. – P. 243–250. 18. Malerba M. Fusicoccin induces in plant cells a programmed cell death showing apoptotic features / M. Malerba, R. Cerana, P. Crosti // Protoplasma. – 2003. – Vol. 222. – P. 113–116. 19. Morohashi Y. Appearance of alternative respiration in cucumber cotyledon mitochondria after treatment with cycloheximide / Y. Morohashi, T. Seto, T. Matsushima // Physiol. Plantarum. – 1991. – Vol. 83. – P. 640–646. 20. Murashige T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures / T. Murashige, F. Scoog // Physiol. Plantarum. – 1962. – Vol. 15. – P. 473–497. 21. Ning S.-B. Characterization of the early stages of programmed cell death in maize root cells by using comet assay and the combination of cell electrophoresis with annexin binding / S.-B. Ning, Y.-C. Song, P. Van Damme // Electrophoresis. – 2002. – Vol. 23. – P. 2096–2102. 22. Protein measurement with folin phenol reagent / O. H. Lowry [et al.] // J. Biol. Chem. – 1951. – Vol. 193. – P. 265–275. 23. Reape T. J. Programmed cell death in plants: distinguishing between different modes / T. J. Reape, E. M. Molony, P. F. McCabe // J. Exp. Bot. – 2008. – Vol. 59. – P. 435–444. 24. Reape T. J. Apoptotic programmed cell death in plants / T. J. Reape, P. F. McCabe // New Phytologist. – 2008. – Vol. 180. – P. 13–26. 25. Sorting out the role of reactive oxygen species during plant programmed cell death induced by ultraviolet-C overexposure / C. Gao [et al.] // Plant Signaling Behavior. – 2008. – Vol. 3. – P. 197–198. 26. Thaxtomin A induces programmed cell death in Arabidopsis thaliana suspension-cultured cells / I. Duval [et al.] // Planta. – 2005. – Vol. 222. – P. 820–831. 27. The programme of cell death in plants and animals – a comparison / K. V. Krishnamurthy [et al.] // Cur. Science. – 2000. – Vol. 79. – P. 1169–1181. 28. Williams B. Plant programmed cell death: can't live with it; can't live without it / B. Williams, M. Dickman // Mol. Plant Path. – 2008. – Vol. 9. – P. 531–544.

Название EN

Авторы EN

Аннотация EN
<p>The possibility of activating programmed cell death in suspension culture of winter wheat with low temperatures (4 и 8 ºС) and temperature subzero (-8 ºС) has been investigated. It has been shown, that treatment with the temperature 8 °С promoted to forming of adaptation mechanisms, whereas the temperature 4 ºС led to cell death in suspension culture, which has been increased after treatment with the temperature below zero. It has been established, that process of death has been accompanied by protoplast condensation, decreasing of respiration activity and DNA fragmentation.</p>

Ключевые слова EN

Литература EN