Журналы
Серии
Начальная страница
Конечная страница
УДК
Раздел
Файл Скачать Изменить файл
Название RU
Авторы RU
Аннотация RU Исследовали уровень активных форм кислорода (АФК) в клетках суспензионной культуры арабидопсиса (Arabidopsis thaliana (L.) Heyn), обработанных ингибиторами различных комплексов дыхательной цепи митохондрий. Показано повышение уровня АФК при ингибировании переноса электронов через комплексы III и IV. В то же время подавление активности комплекса I, напротив, приводило к снижению уровня АФК. Кроме того, уровень АФК был снижен и в клетках мутантной линии арабидопсиса с нарушенным функционированием комплекса I. Таким образом, дисфункция дыхательного комплекса I в растительных митохондриях сопровождается существенным снижением уровня АФК, что принципиальным образом отличает реакцию растительных клеток от таковой животных клеток.
Исследовали уровень активных форм кислорода (АФК) в клетках суспензионной культуры арабидопсиса (Arabidopsis thaliana (L.) Heyn), обработанных ингибиторами различных комплексов дыхательной цепи митохондрий. Показано повышение уровня АФК при ингибировании переноса электронов через комплексы III и IV. В то же время подавление активности комплекса I, напротив, приводило к снижению уровня АФК. Кроме того, уровень АФК был снижен и в клетках мутантной линии арабидопсиса с нарушенным функционированием комплекса I. Таким образом, дисфункция дыхательного комплекса I в растительных митохондриях сопровождается существенным снижением уровня АФК, что принципиальным образом отличает реакцию растительных клеток от таковой животных клеток.
Ключевые слова RU
Литература RU 1. Индукция экспрессии гена gdh2 арабидопсисапри изменении редокс-состояния митохондриальной дыхательной цепи / В. И. Тарасенко [и др.] //Биохимия. – 2009. – Т. 74. – С. 62–69. 2. Тарасенко В. И. Характеристика растенийарабидопсиса с инактивированным геном Fe-S-субъединицы комплекса I дыхательной цепи митохондрий / В. И. Тарасенко, Е. Ю. Гарник, Ю. М. Константинов // Физиология растений. – 2010. – Т. 57,№ 3. – С. 415–424. 3. Baker C. J. An improved method for monitoringcell death in cell suspension and leaf disc assays usingevans blue / C. J. Baker, N. M. Mock // Plant. Cell, Tissueand Organ. Culture. – 1994. – Vol. 39. – P. 7–12. 4. Complex I dysfunction redirects cellular and mitochondrialmetabolism in Arabidopsis / M. Garmier [etal.] // Plant. Physiol. – 2008. – Vol. 148. –P. 1324–1341. 5. Differential patterns of reactive oxygen speciesand antioxidative mechanisms during atrazine injuryand sucrose-induced tolerance in Arabidopsis thalianaplantlets / F. Ramel [et al.] // BMC Plant. Biology. –2009. – Vol. 9. – Art. N 28. 6. DiMauro S. Mitochondrial respiratory-chain diseases/ S. DiMauro, E. A. Schon // N. Engl. J. Med. –2003. – Vol. 348. – P. 2656–2668. 7. Eukaryotic complex I: functional diversity andexperimental systems to unravel the assembly process /C. Remacle [et al.] // Mol. Genet. Genomics. – 2008. –Vol. 280. – P. 93–110. 8. Maxwell D. P. The alternative oxidase lowersmitochondrial reactive oxygen production in plant cells /D. P. Maxwell, Y. Wang, L. McIntosh // Proc. Natl.Acad. Sci. USA. – 1999. – Vol. 96. – P. 8271–8276. 9. Meyer E. H. Remodeled respiration in ndufs4with low phosphorylation efficiency suppresses Arabidopsisgermination and growth and alters control of metabolismat night / E. H. Meyer, T. Tomaz, A. J. Carroll// Plant. Physiol. – 2009. – Vol. 151. – P. 603–619. 10. Mitochondrial toxins and neurodegenerativediseases / A. Ayala [et al.] // Front. Biosci. – 2007. –Vol. 12. – P. 986–1007. 11. Moller I. M. Plant mitochondria and oxidativestress: electron transport, NADPH turnover, and metabolismof reactive oxygen species / I. M. Moller //Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. – 2001. –Vol. 52. – P. 561–591. 12. Rasmusson A. G. Alternative NAD(P)H dehydrogenasesof plant mitochondria / A. G. Rasmusson,K. L. Soole, T. E. Elthon // Annu. Rev. Plant. Biol. –2004. – Vol. 55. – P. 23–39. 13. Rhoads D. M. Mitochondrial reactive oxygenspecies. Contribution to oxidative stress and interorganellarsignaling / D. M. Rhoads, A. L. Umbach,C. C. Subbaiah // Plant. Physiol. – 2006. – Vol. 141. –P. 357–366. 14. Zhang Q. Regulation of respiration in rotenone-treated tobacco cell suspension cultures /Q. Zhang, K. L. Soole, J. T. Wiskich // Planta. – 2001. –Vol. 212. – P. 765–773.
Название EN
Авторы EN
Аннотация EN The reactive oxygen species (ROS) level was studied in the Arabidopsis suspension cell cultures treated with inhibitors of different respiratory complexes. The increase of ROS level upon the inhibition of electron transfer through complexes III and IV was shown. At the same time, the inhibition of complex I activity led to the decrease of ROS level. Moreover, the decreased ROS level was also detected in the cells of mutant Arabidopsis line with impaired functioning of complex I. Thus, the complex I dysfunction in plant mitochondria is accompanied with significant ROS decrease, which clearly differs plant cells from its animal counterpart.
The reactive oxygen species (ROS) level was studied in the Arabidopsis suspension cell cultures treated with inhibitors of different respiratory complexes. The increase of ROS level upon the inhibition of electron transfer through complexes III and IV was shown. At the same time, the inhibition of complex I activity led to the decrease of ROS level. Moreover, the decreased ROS level was also detected in the cells of mutant Arabidopsis line with impaired functioning of complex I. Thus, the complex I dysfunction in plant mitochondria is accompanied with significant ROS decrease, which clearly differs plant cells from its animal counterpart.
Ключевые слова EN
Литература EN