journal.isu.ru

Начальная страница

Конечная страница

УДК

Раздел
     

Файл
Скачать Изменить файл

Название RU

Авторы RU

Аннотация RU
<p>Показано, что обработка суспензии клеток арабидопсиса (Arabidopsis thaliana) ингибитором комплекса III дыхательной цепи антимицином А или ингибитором комплекса IV цианидом приводит к увеличению содержания транскриптов гена gdh2, кодирующего α-субъединицу митохондриальной глутаматдегидрогеназы. Ингибирование комплекса I не оказывает воздействия на уровень транскриптов gdh2. Таким образом, экспрессия gdh2 специфически реагирует на изменения состояния определенных участков дыхательной цепи. Показана необходимость фосфорилирования белков для передачи сигнала об индукции экспрессии gdh2 из митохондрий в ядро.</p>

Ключевые слова RU

Литература RU
1. Гарник Е. Ю. Дифференциальная экспрессиямитохондриальных генов кукурузы при измененииредокс-состояния митохондрий / Е. Ю. Гарник [идр.] // Физиология растений.– 2006. – Т. 53, № 4. –С. 518–24. 2. Dutilleul C. Leaf mitochondria modulate wholecell redox homeostasis, set antioxidant capacity, and determinestress resistance / C. Dutilleul [et al.] // PlantCell. – 2003. – Vol. 15. – P. 1212–1226. 3. Dojcinovic D. Identification of a region of theAOX1a promoter necessary for mitochondrial retrograderegulation of expression / D. Dojcinovic [et al.] //Plant Mol. Biol. – 2005. – Vol. 58. – P. 159–175. 4. Karpova O. V. Differential expression of alternativeoxidase genes in maize mitochondrial mutants /E. V. Kuzmin, T. E. Elthon, K. J. Newton // Plant Cell. –2002. – Vol. 14. – P. 3271–3284. 5. Lister R. Stress-induced co-expression of alternativerespiratory chain components in Arabidopsisthaliana / R. Lister [et al.] // Plant Physiol. – 2004. –Vol. 134. – P. 777–789. 6. Murashige T. A Revised Medium for RapidGrowth and Bioassays with Tobacco Tissue Cultures /T. Murashige, F. Skoog // Physiol. Plant. – 1962. –Vol. 15. – P. 473–497. 7. Plant mitochondria and oxidative stress: electontransport, NADPH turnover, and metabolism of reactiveoxygen species / I. M. Moller // Annu. Rev. Plant Physiol.Plant Mol. Biol. – 2001. – Vol. 52. – P. 561–591. 8. Phannschmidt T. Photosynthetic control ofchloroplast gene expression / T. Phannschmidt, A. Nilson,J. F. Allen // Nature. – 1999. – Vol. 397. – P. 625–628. 9. Purnell M. P. Tobacco isoenzyme 1 ofNAD(H)-dependent glutamate dehydrogenase catabolizesglutamate in vivo / M. P. Purnell, J. R. Botella //Plant Physiology. – 2007. – Vol. 143. – P. 530–539. 10. Rikhvanov E. G. Nuclear-mitochondrial crosstalkduring heat shock in Arabidopsis cell culture /E. G. Rikhvanov [et al] // Plant J. – 2007. – Vol. 52. –P. 763–778. 11. Vervoerd T. C. A small-scale procedure forrapid isolation of plant RNAs / T. C. Vervoerd,B. M. Dekker, A. Hoekema // Nucl. Acids Res. – 1989. –Vol. 17. – P. 2362.

Название EN

Авторы EN

Аннотация EN
<p>The treatment of Arabidopsis thaliana suspension cell culture with an inhibitor of respiratory complex III antimycin A or with an inhibitor of respiratory complex IV potassium cyanide led to a rapid increase of transcript content of gdh2 gene encoding alpha-subunit of glutamate dehydrogenase. Inhibition of complex I upon the addition of rotenone had no influence on the transcript level. We suggest that gdh2 expression responds to changes of the state of specific respiratory chain regions. We showed that protein phosphorylation is essential component of signal transduction into nucleus leading to gdh2 expression induction.</p>

Ключевые слова EN

Литература EN